一、技術方案
•小鼠血小板表面糖蛋白的流式細胞術分析
•免疫組織化學(采用丙酮固定的冰凍切片)
•免疫沉淀
•免疫印跡(蛋白質印跡分析)
二、小鼠血小板表面糖蛋白的流式細胞術分析
(1)緩沖液和試劑
•Tris 緩沖鹽水 / 肝素(TBS/Hep):20 mM Tris/HCl;137 mM NaCl;pH 7.3;含 20 U/ml 肝素。
•磷酸鹽緩沖鹽水(PBS):137 mM NaCl;2.7 mM KCl;1.5 mM KH?PO?;8 mM Na?HPO?;pH 7.14。
•Tyrode's 緩沖液(改良型):134 mM NaCl;0.34 mM Na?HPO?;2.9 mM KCl;12 mM NaHCO?;20 mM Hepes;pH 7.0;5 mM 葡萄糖;0.35%(w/v)牛血清白蛋白。
•腺苷三磷酸雙磷酸酶(Apyrase):10 U/ml 儲備液(溶于雙蒸水,-20℃保存)。
•前列環(huán)素(前列腺素 I?,PGI?):1 mM 儲備液(溶于雙蒸水,-20℃保存)。
•CaCl?:1 M 儲備液(溶于雙蒸水)。
(2)稀釋或洗滌全血的制備
1.用肝素化玻璃毛細管(如 ringcap)從眼眶后叢采集 50ul 血液,加入含 200ul TBS / 肝素(20 U/ml)的 1.5 ml 試管中。
2.用 1 ml Tyrode's 緩沖液稀釋,用于流式細胞術分析。
3.若要制備 “洗滌過的血液":將稀釋血液以 900×g離心 5 分鐘,棄上清,將沉淀重懸于 1.25 ml Tyrode's 緩沖液中。
4.實驗開始前,直接加入 1 mM CaCl?。
注意:對于凝血酶誘導的血小板活化,需去除血漿以避免抗凝血酶活性的干擾。
(3)洗滌小鼠血小板的制備
“洗滌血小板" 的制備耗時更長,但需要更多血液,且所得血小板制品可使用數(shù)小時。
1.用 1.5 cm 玻璃毛細管從眼眶后叢采集 0.5–1 ml 血液,加入含 200ul TBS / 肝素(20 U/ml)的 1.5 ml 試管中。
2.樣本以 500×g離心 5 分鐘,將 ** 富含血小板的血漿(PRP)** 轉移至新試管(為回收血小板,需取包含所有紅細胞的完整白色層)。
3.將血小板懸液以 300×g離心 8 分鐘,將無紅細胞的 PRP 轉移至新試管。
4.加入 0.5uM 前列環(huán)素(PGI?),以 1300×g離心 5 分鐘。
5.將血小板沉淀重懸于 1 ml Tyrode's 緩沖液,加入 0.02 U/ml 腺苷三磷酸雙磷酸酶和 0.5uM 前列環(huán)素,37℃孵育 5 分鐘后,以 1300×g離心。
6.重復步驟 5:將血小板沉淀重懸于 0.5 ml Tyrode's 緩沖液,加入 0.02 U/ml 腺苷三磷酸雙磷酸酶,37℃孵育 30 分鐘。
(4)血小板表面糖蛋白的單色分析
1.將 5ul特異性抗體或陰性對照抗體與 25ul “稀釋全血" 或 “洗滌過的血液" 加入測定管,渦旋振蕩 1–2 秒。
2.室溫孵育 15 分鐘。
3.加入 400ul PBS 終止反應,并在 30 分鐘內完成分析。
(圖示說明:樣本按上述方法與 FITC 偶聯(lián)的對照 IgG(黑線)、抗 - GPVI 或抗 - GPV 孵育。通過 “ 前向散射(FSC)/ 側向散射(SSC)特征對血小板設門;設門(R1)血小板的熒光 1(FL1)"強度在單獨直方圖中顯示。RBC:紅細胞。)
(5)血小板活化的雙色分析
1.向測定管中加入 5ul特異性抗體或陰性對照抗體,同時加入 5ul泛血小板標志物。
2.此時可加入小體積(<5ul)額外試劑(如抑制劑)。
3.加入 25ul “稀釋全血"“洗滌過的血液" 或 “洗滌過的血小板(1×10?個)",渦旋振蕩 1–2 秒。
4.室溫孵育 15 分鐘;加入 400ul PBS 終止反應,并在 30 分鐘內完成分析。
(圖示說明:洗滌后的小鼠血小板與 PBS(靜息組)或凝血酶(0.1 U/ml),以及 FITC 和 PE 偶聯(lián)的單克隆抗體(mAbs)共同孵育。通過GPIX 或 GPIIbIIIa 的表達對血小板設門(FL1;gate 1)。)
三、免疫組織化學(采用丙酮固定的冰凍切片)
請注意:不建議對(多)聚甲醛固定的樣本進行免疫染色 —— 因為大多數(shù)大鼠抗體在小鼠組織上的染色效果較差。
1.將冰凍組織切片貼于載玻片,4℃下用冰冷的 100% 丙酮固定 20 分鐘;室溫下干燥樣本過夜。
2.為減少試劑用量,可用防水筆在載玻片的組織切片周圍畫 “疏水環(huán)";后續(xù)所有步驟中,該環(huán)內區(qū)域不得干燥,因此建議在濕盒中進行孵育。
3.切片在 PBS 中孵育 20 分鐘。
4.若使用過氧化物酶偶聯(lián)的二抗:將切片與 0.03% H?O?在室溫下孵育 10 分鐘(抑制內源性過氧化物酶活性),再用 PBS 沖洗切片 3 次(每次 5 分鐘)。
5.切片在封閉液(二抗宿主物種的血清,用 PBS 按 1:10 或 1:100 稀釋)中室溫孵育 1 小時。
6.用封閉液稀釋的一抗(2–10ug/ml)覆蓋切片,室溫孵育 2 小時。
7.用 PBS 沖洗切片 3 次(每次 5 分鐘)。
8.用熒光團偶聯(lián)或過氧化物酶偶聯(lián)的二抗(如親和純化的驢抗大鼠 IgG-FITC 或 - HRP,按制造商說明用封閉液稀釋)覆蓋切片,室溫孵育 1 小時。
9.吸去多余液體,用 PBS 沖洗 3 次(每次 5 分鐘)。
10.a)熒光染色的樣本可直接用熒光顯微鏡分析。
11.b)若要顯示 “過氧化物酶標記的結構":用新鮮制備的3 - 氨基 - 9 - 乙基咔唑(AEC)底物覆蓋切片,孵育至顯微鏡下可見紅色染色(時間 5–30 分鐘不等);在出現(xiàn)橙色背景染色前,用去離子水沖洗終止反應。如需復染,將樣本與蘇木精孵育 30–240 秒,再用流動溫水沖洗切片 20 分鐘;最后用水性包埋液封片。
四、免疫沉淀
(1)緩沖液和試劑
•PBS/EDTA:137 mM NaCl,2.7 mM KCl,1.5 mM KH?PO?,8.0 mM Na?HPO??2H?O,pH 7.3;含 5 mM EDTA。
•IP 緩沖液:40 mM Tris/HCl,0.3 M NaCl,1 mM EDTA,2 mM PMSF,10ug/ml 亮抑酶肽,10ug/ml 抑肽酶,1ug/ml 胃蛋白酶抑制劑。
•Igepal:10% 儲備液(溶于雙蒸水)。
•2×SDS - 樣本緩沖液:10%β- 巰基乙醇(用于還原緩沖液),10% Tris 緩沖液(1.25 M),20% 甘油,4% SDS,0.02% 溴酚藍。
(2)操作步驟
1.洗滌小鼠血小板或細胞(每次免疫沉淀用 1×10?個)3 次:每次用 1 ml PBS/EDTA,5 分鐘,1300×g;然后重懸于 IP 緩沖液。
2.加入 1% Igepal,室溫裂解血小板 15–20 分鐘。
3.以 10,000×g離心 5 分鐘去除細胞碎片,將上清液轉移至新管。
4.加入 20ul“ 洗滌過的蛋白 G 瓊脂糖(PGA)" 進行 “預清除",4℃孵育至少 3 小時。
5.樣本以 3,000×g離心 5 分鐘;將上清液轉移至新管,加入 “數(shù)據(jù)表指定濃度的抗體"(通常 2–5ug/ml),30 分鐘后加入 25ul 洗滌過的 PGA;4℃下旋轉孵育至少 2 小時(最好過夜)。
6.洗滌沉淀物:樣本以 3,000×g離心 1 分鐘;向 PGA 沉淀中加入 1 ml 含 1% Igepal 的 1×IP 緩沖液,再以 3,000×g離心 1 分鐘。
7.用 plain IP 緩沖液洗滌 PGA 沉淀 2 次(每次 1 分鐘,3,000×g)。
8.將沉淀重懸于 25ul 1×SDS 樣本緩沖液(還原或非還原型),煮沸 5 分鐘;樣本可冷凍(-20℃)備用,或用于 SDS-PAGE 及后續(xù)免疫印跡分析。
五、免疫印跡(蛋白質印跡分析)
(1)緩沖液和試劑
•裂解緩沖液:40 mM Tris/HCl,0.3 M NaCl,1 mM EDTA,0.05% NaN?,1% Igepal。
•PBS:137 mM NaCl,2.7 mM KCl,1.5 mM KH?PO?,8.0 mM Na?HPO?·2H?O,pH 7.3。
•PBS-5% 牛奶:含 5% 非脂干奶的 PBS。
•PBST:含 0.1% Tween 20 的 PBS。
•PBST-1% 牛奶:含 1% 非脂干奶的 PBST。
(2)操作步驟(所有步驟可在室溫下進行)
1.用裂解緩沖液制備小鼠血小板或細胞的裂解物,與(2×)SDS 樣本緩沖液在 95℃孵育 5 分鐘。
2.通過 "SDS - 聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)"分離蛋白質(還原或非還原條件,依數(shù)據(jù)表說明),然后將蛋白質轉移至 PVDF 膜。
3.用 PBS-5% 牛奶封閉膜,振蕩孵育1 小時。
4.用含 2–5ug/ml 一抗的 PBST-1% 牛奶孵育膜,振蕩 1 小時。
5.用 PBST 沖洗膜 2 次,再用 PBST 洗滌 2 次(每次 30 分鐘);洗滌程序可簡化為 “每次 10 分鐘,共 3 次",但需單獨驗證。
6.用含 HRP 偶聯(lián)抗大鼠 IgG 的 PBST-1% 牛奶孵育膜,振蕩 45–60 分鐘。
7.用 PBST 沖洗膜 2 次,再用 PBST 洗滌 2 次(每次 30 分鐘)。
8.用 "ECL(增強化學發(fā)光)"顯示結合的抗體。
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